福建等滲條件中鹽核酸酶70950-160

大規(guī)模生產(chǎn)階段，AAV/LV載體生產(chǎn)流程跟抗體、疫苗類藥物的生產(chǎn)類似，主要包含上游培養(yǎng)、下游純化及制劑部分。上游培養(yǎng)分為質(zhì)粒開發(fā)、細胞擴增、三質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染及病毒載體生產(chǎn)等步驟。下游純化分為細胞裂解釋放AAV病毒顆粒（可以通過去污劑、機械作用、高滲或凍融操作等）or收獲細胞上清液得到含LV病毒原液、加入核酸酶以減少宿主細胞核酸污染、澄清是通過離心或過濾等方法去除細胞碎片和雜質(zhì)等、超濾濃縮以減少后續(xù)色譜純化體系、親合及離子交換等純化得到高純度病毒載體。制劑部分主要是超濾更換緩沖液、過濾除菌及制劑灌裝等。相比全能核酸酶，M-SAN HQ中鹽核酸酶能將HCD酶切成更小片段，破壞核小體結(jié)構(gòu)。福建等滲條件中鹽核酸酶70950-160

ArcticZymes Technologies于2019年推出了M-SAN HQ中鹽核酸酶，2021年推出對應(yīng)的M-SAN HQ ELISA kit。該試劑盒原理是采用雙抗夾心法定量檢測各種生物制品的中間品、半成品和成品中M-SAN HQ中鹽核酸酶的殘留含量，特異性的anti-M-SAN作為捕獲抗體偶聯(lián)在孔板上，辣根過氧化酶HRP標記anti-M-SAN作為檢測抗體，TMB是檢測反應(yīng)底物。該試劑盒特異識別M-SAN HQ中鹽核酸酶，對其它核酸酶沒有特異性結(jié)合。它的定量范圍是0.12-7.5ng/ml；12*8strips的設(shè)計規(guī)格，使用靈活，更能降低使用成本。福建等滲條件中鹽核酸酶70950-160M-SAN HQ中鹽核酸酶是用Pichia pastoris表達的重組非特異內(nèi)切核酸酶。

大多數(shù)研究級別的慢病毒是通過批次濃縮而不是粗制劑之后應(yīng)用的，濃縮基本上是通過兩步離心法產(chǎn)生的。在70000g通過超速離心濃縮后的慢病毒再通過蔗糖緩沖(50000g)純化，然后溶解在配方緩沖液中。一種改進，特別是純度方面的改進，基于離心/色譜聯(lián)用的純化方法。例如，Kutner等評估了組合純化/濃縮方法。蔗糖緩沖的超速離心結(jié)合陰離子交換層析獲得了88.2%的收率，而相反的組合則獲得了77.6%的收率。在兩種方法中，濃縮都超過了100倍，病毒滴度都超過了1010TU/ml(VSV-g包被的慢病毒)。

倫敦大學(xué)學(xué)院（UCL）的工藝開發(fā)團隊，在細胞藥物Car-T涉及的慢病毒（Lentivirus，LV）生產(chǎn)過程中，比較了Benzonase和M-SAN HQ中鹽核酸酶在酶活、酶切時間、各階段LV的穩(wěn)定性等方面的表現(xiàn)，發(fā)現(xiàn)在生理鹽條件下M-SAN HQ中鹽核酸酶酶活更高、酶切時間更短，同時用納米顆粒分析（NTA）技術(shù)確認M-SAN HQ組得到的LV病毒顆粒聚集更少、穩(wěn)定性更高。他們會繼續(xù)探究HCD是否影響LV的穩(wěn)定性，及對LV侵染效率和生命周期是否有影響。通過更多研究，我們探究M-SAN HQ中鹽核酸酶助力LV生產(chǎn)的關(guān)鍵機制。M-SAN HQ中鹽核酸酶的檢測標準，都符合USP-EP要求。

在生物工藝流程中，需要使用核酸酶去除終產(chǎn)品中的核酸污染，而核酸酶作為外源成份，也需要在生產(chǎn)流程中去除。核酸酶去除工藝包括熱滅活法、酶抑制劑、離子交換和親合層析法等。慢病毒LV的pI在6.0-6.5左右，包裝了完整基因組DNA后的AAV病毒顆粒PI大致為5.9，來自于S.marcescens的全能核酸酶pI 6.85左右，M-SAN HQ中鹽核酸酶pI 8.7左右。因此，在同樣的條件下，從LV/AAV溶液中去除M-SAN HQ中鹽核酸酶比去除Benzonase全能核酸酶更容易、更徹底。染色質(zhì)的雙螺旋結(jié)構(gòu)影響DNA的檢測與酶切處理，而中鹽核酸酶降解染色質(zhì)效率更高。廣東ArcticZymes中鹽核酸酶70950

M-SAN HQ中鹽核酸酶兼容常見細胞培養(yǎng)基，在多種培養(yǎng)基條件下去除核酸污染效率更高；福建等滲條件中鹽核酸酶70950-160

病毒載體作為細胞藥物生產(chǎn)的關(guān)鍵原材料，直接關(guān)系到細胞產(chǎn)品質(zhì)量。載體質(zhì)量的控制和工藝穩(wěn)定性和批間一致性都是關(guān)系到產(chǎn)品能否產(chǎn)業(yè)化的關(guān)鍵。在生產(chǎn)純化過程中，需要去除上游過程中的培養(yǎng)基成分、誘導(dǎo)劑、宿主蛋白和核酸等雜質(zhì)，但是由于逆轉(zhuǎn)錄病毒顆粒比較大，高異質(zhì)表面糖蛋白，而且活性易于受剪切影響，對下游純化提出了巨大的挑戰(zhàn)。目前病毒載體純化方法包括超速離心、離子交換層析、分子排阻層析、親和層析、滲濾等。各種方法各有利弊，就產(chǎn)業(yè)化而言，離子交換純化效果比較好，條件易于摸索，易于規(guī)模放大。福建等滲條件中鹽核酸酶70950-160