殘留的宿主DNA是生產中產生的雜質,其存在潛在的致瘤性、傳染性和免疫原性等風險。相關研究表明,基因的大小普遍在200bp以上,因此大于200bp有可能會有一定的致病性,而且殘留DNA片段越大,生物制品的風險等級越高。因此,各國監(jiān)管機構對其提出了嚴格要求。美國食品藥品監(jiān)督管理局(FDA)在《關于人類基因zhiliao新產品生產指導文件》中明確指出HCD的片段要小于200bp。2022年5月,國家藥品監(jiān)督管理局藥品評審中心(CDE)發(fā)布的《體內基因藥物產品藥學研究與評價技術指導原則(試行)》中也明確指出需對DNA殘留量和殘留片段大小進行控制,建議盡量將DNA殘留片段的大小控制在200bp以下。在已有工藝中,不需做任何調整,用中鹽核酸酶能夠完全替換全能核酸酶,且去除HCD效率更高;遼寧等滲條件中鹽核酸酶70950-150
在干細胞醫(yī)治領域, 某些疾病靠單純的細胞替代并不能取得滿意效果。利用逆轉錄病毒和慢病毒將外源目的基因整合到干細胞基因組,對基因功能缺失的遺傳病具有良好療效,但也存在一定致瘤風險。相比之下,CRISPR/Cas9基因編輯技術能夠精確實現(xiàn)基因敲入、敲除及堿基修復。因此, 采用CRISPR/Cas9基因編輯技術對干細胞進行基因改造,不僅能夠增加干細胞醫(yī)治的疾病范圍,也能更大程度地保證療效的安全性。目前,CRISPR/Cas9在干細胞醫(yī)治領域發(fā)揮著重要作用,同時更多由CRISPR/Cas9編輯的干細胞藥物正在開發(fā)中。遼寧上海倍篤生物中鹽核酸酶中鹽核酸酶能夠將單鏈及雙鏈的DNA及RNA,消化成5個堿基為主的寡核苷酸oligos。
經典的慢病毒載體(LV)的生產工藝如下,——三質粒系統(tǒng)瞬時轉染HEK293細胞系,轉染24小時后LV由轉染陽性細胞生產并排出到培養(yǎng)上清液中;收獲上清培養(yǎng)液后,加入核酸酶去除HCD污染,通過澄清步驟去除大的細胞碎片等雜質;下游純化步驟分離LV載體,純化方法包括切向流過濾TFF、色譜純化及超速離心;純化后的LV病毒顆粒經過無菌過濾,更換到優(yōu)化后的配方中,灌裝并冷凍保存。每批Car-T生產時取對應量的LV病毒,切忌反復凍融,否則LV病毒會失活。
ArcticZymes Technologies于2019年推出了M-SAN HQ中鹽核酸酶,2021年推出對應的M-SAN HQ ELISA kit。該試劑盒原理是采用雙抗夾心法定量檢測各種生物制品的中間品、半成品和成品中M-SAN HQ中鹽核酸酶的殘留含量,特異性的anti-M-SAN作為捕獲抗體偶聯(lián)在孔板上,辣根過氧化酶HRP標記anti-M-SAN作為檢測抗體,TMB是檢測反應底物。該試劑盒特異識別M-SAN HQ中鹽核酸酶,對其它核酸酶沒有特異性結合。它的定量范圍是0.12-7.5ng/ml;12*8strips的設計規(guī)格,使用靈活,更能降低使用成本。ArcticZymes成立于20世紀80年代后期,總部位于挪威北部的特羅姆瑟。
宿主細胞DNA殘留的擔憂是基于致ai風險理論,特別是生產細胞系所包含的致ai序列,比如較常見腺病毒基因E1A和E1B(HEK293, PerC.6 和CAP 細胞系),人乳tou瘤病毒E6和E7基因(HeLa細胞系)等。當使用致ai細胞系生產AAV時,下游純化須盡可能減少殘留DNA。工業(yè)上一般使用核酸酶分解殘留DNA,普遍認為小于200 bp的DNA片段可有效降低致ai風險。宿主細胞蛋白殘留與免疫原性、炎癥或過敏性休克有關。盡管與非人類的生產原料相比(非人類細胞系如BHK21或昆蟲細胞,以及輔助病毒如HSV、腺病毒、桿狀病毒),人類細胞免疫原性比較弱。致力于從深海microbe中識別新的冷適應酶,用于分子研究、IVD和biopharma領域。上海中鹽核酸酶70950
生理鹽濃度下,M-SAN HQ中鹽核酸酶性能優(yōu)于常用核酸酶。遼寧等滲條件中鹽核酸酶70950-150
基因藥物是指將外源基因引入靶細胞,糾正或補償基因缺陷或異常引起的疾病的。這種策略對許多疾病的康復有很大的潛力,包括ai癥、神經退行性疾病和心血管疾病。目前已經進行了2000多項基因藥物臨床試驗,大多數(shù)載體已被證明是有效和安全的。目前的研究表明,大約64%的基因藥物臨床試驗是為了醫(yī)治ai癥疾病,而最常見的策略是傳遞抑制cancer生長或殺死cancer的基因?;蛩幬锏年P鍵是使用安全有效的基因傳遞載體,如病毒載體和非病毒載體。病毒載體是常用的基因導入的方式之一。而腺病毒的載體由于轉基因效率高,不受靶細胞是否分裂的限制,容易制備高滴度的病毒載體,在基因藥物和免疫領域有更多的應用。遼寧等滲條件中鹽核酸酶70950-150