T7EndonucleaseI(T7EI)在CRISPR/Cas9基因編輯中的應(yīng)用主要體現(xiàn)在突變體檢測和基因編輯效率評估上。以下是T7EI在CRISPR/Cas9中的具體應(yīng)用步驟和特點:1.**基因編輯效率評估**:-T7EI用于評估CRISPR-Cas9在給定的導(dǎo)向RNA靶位點上對細(xì)胞群體進(jìn)行基因編輯的效率。-通過PCR擴增圍繞CRISPR導(dǎo)向RNA靶位點的基因組DNA,如果CRISPR-Cas9介導(dǎo)的非同源末端連接(NHEJ)修復(fù)事件引入了突變,變性和退火將形成突變型和野生型PCR擴增子的異源雙鏈DNA。2.**突變體檢測**:-如果CRISPR/Cas9編輯成功在DNA上引入突變,則可與野生型DNA片段退火產(chǎn)生異質(zhì)雙鏈DNA。T7EI可以識別該DNA上的不完全配對的DNA位點然后進(jìn)行雙鏈切割,通過瓊脂糖凝膠電泳即可顯示酶切后的條帶,從而半定量判定基因編輯效果。-T7EI能識別長度大于或等于2bp的插入、缺失或突變導(dǎo)致的錯配DNA,不能識別1bp的插入、缺失或突變。3.**實驗步驟**:-收集細(xì)胞并提取基因組DNA,然后使用PCR擴增期望編輯的基因組區(qū)域。擴增子的長度建議為0.5-1kb。-對擴增的DNA進(jìn)行變性和退火復(fù)性,以產(chǎn)生異質(zhì)雙鏈DNA。-使用T7EI酶處理退火后的DNA產(chǎn)物,在37℃孵育15分鐘。
在PCR實驗中,為了避免引物與已知序列的交叉反應(yīng),從而確保實驗的特異性,以下是一些關(guān)鍵的引物設(shè)計原則和策略:1.**選擇高保守性區(qū)域**:引物比較好設(shè)計在模板cDNA的保守區(qū)內(nèi),這樣可以確保引物與目標(biāo)序列的特異性結(jié)合。通過比較不同物種的同一基因序列,可以確定基因的保守區(qū)。2.**避免引物與非目標(biāo)序列的同源性**:設(shè)計引物時,應(yīng)避免與基因組中的重復(fù)序列、假基因或高同源性區(qū)域設(shè)計引物??梢酝ㄟ^BLAST等工具對引物進(jìn)行同源性分析,確保引物只與目標(biāo)序列結(jié)合。3.**引物長度和GC含量**:引物長度一般在15-30堿基之間,常用的是18-27bp。GC含量一般為40%-60%,以45-55%為宜。過高或過低的GC含量都不利于引發(fā)反應(yīng),上下游引物的GC含量和Tm值應(yīng)保持接近。4.**避免引物的3'端錯配**:引物3'端的堿基應(yīng)嚴(yán)格要求配對,特別是倒數(shù)第二個堿基,以避免因末端堿基不配對而導(dǎo)致PCR失敗。引物3'端比較好不要選擇A,比較好選擇T,因為當(dāng)末位鏈為T時,錯配的引發(fā)效率降低。5.**避免引物自身及引物之間的互補序列**:引物自身不應(yīng)存在互補序列,否則引物自身會折疊成發(fā)夾結(jié)構(gòu),影響引物與模板的復(fù)性結(jié)合。前后引物之間也不應(yīng)具有互補性,尤其應(yīng)避免3'端的互補重疊以防止引物二聚體的形成。Cas9 NLS (SpCas9-NLS)Cas12a不僅具有順式切割活性,還具備獨特的反式切割活性,這使得它能夠無差別地裂解附近的單鏈DNA。
Lambda核酸外切酶(LambdaExonuclease,簡稱λExonuclease)是一種具有特定特性和應(yīng)用的酶,以下是其主要特點和應(yīng)用:1.**特異性作用**:λExonuclease是一種5'→3'核酸外切酶,能選擇性地沿5'→3'方向消化5'端磷酸化的雙鏈DNA。2.**酶切活性**:對單鏈DNA和5'端未磷酸化修飾的DNA的酶切活性較低,不能從DNA的切刻或缺口處起始消化。3.**嗜磷酸性**:該酶具有非常強的嗜磷酸性,磷酸化的核酸鏈與非磷酸化的核酸鏈的切割效率相差達(dá)200倍以上。4.**切割效率**:Lambda核酸外切酶是一種具有高度持續(xù)性的堿性核酸外切酶,可以連續(xù)地將核酸切割成為單個堿基,切割比較高速率可以達(dá)到1000nt/S。5.**應(yīng)用領(lǐng)域**:-生成單鏈PCR產(chǎn)物用于DNA測序。-DNA單鏈構(gòu)象多態(tài)性(SSCP)分析。-滾環(huán)擴增。-從雙鏈DNA片段生成單鏈DNA。-PCR產(chǎn)物的克隆。-質(zhì)粒制備凈化。6.**酶活性定義**:Oneunitisdefinedastheamountofenzymerequiredtoproduce10nmolofacid-solubledeoxyribonucleotidefromdouble-strandedsubstrateinatotalreactionvolumeof50μlin30minutesat37oCin1XLambdaExonucleaseReactionBufferwith1μgsonicatedduplex[3H]-DNA。
磁珠法質(zhì)粒小量抽提試劑盒是一種利用磁性納米顆粒固相核酸富集技術(shù)來純化質(zhì)粒DNA的產(chǎn)品。它通常包括高性能納米磁珠和獨特的緩沖體系組合,通過裂解菌體后釋放的DNA,能夠有效地結(jié)合于磁珠表面,漂洗除雜后獲得高質(zhì)量的目的質(zhì)粒。以下是磁珠法質(zhì)粒小量抽提試劑盒的一些主要特點和應(yīng)用:1.**快速簡便**:操作步驟簡單,無需多次離心,整個抽提過程通常只需20-25分鐘。2.**高得率和純度**:可以從1-5ml新鮮大腸桿菌菌液中分離純化2-20μg高質(zhì)量的質(zhì)粒DNA。純化得到的DNA質(zhì)量高,完整性好,OD260/280比值一般為1.8~1.9之間,OD260/230比值大于2.0。3.**適用性廣**:適用于1-5mL小體積高通量菌液質(zhì)粒抽提,且抽提所得的質(zhì)粒DNA可直接用于酶切、測序、文庫篩選、連接和轉(zhuǎn)化等各種下游分子生物學(xué)實驗。4.**自動化兼容**:可整合移液法自動化儀器和磁棒法自動化儀器進(jìn)行高通量提取實驗。5.**安全性高**:操作過程中不涉及酚/氯仿等有毒試劑,更加環(huán)保和安全。6.**成本效益**:相比傳統(tǒng)的離心柱法,磁珠法可以減少離心次數(shù),獲得完整性更好的質(zhì)粒,且操作更為簡便快捷。7.**操作靈活**:磁珠的使用量可靈活調(diào)節(jié),適合不同體積和濃度的樣品處理。FnCas12a包含約1300個氨基酸,含有RuvC-like結(jié)構(gòu)域,同時具有DNA和RNA內(nèi)切酶的活性。
提取的DNA質(zhì)量評估通常涉及以下幾個方面:1.**純度評估**:-**分光光度法**:通過測量DNA樣本在260nm和280nm處的吸光度(OD值)來評估DNA的純度。純度可以通過OD260/OD280的比值來評估,對于純DNA,這個比值通常在1.8左右。如果比值低于1.8,可能表明存在蛋白質(zhì)污染;如果高于1.9,則可能存在RNA污染。此外,OD260/OD230的比值可以用來評估鹽離子等雜質(zhì)的殘留,純DNA的比值應(yīng)在2.0-2.2之間。-**瓊脂糖凝膠電泳法**:通過電泳分離DNA片段,根據(jù)DNA在凝膠上的遷移情況來評估其純度。如果泳道口中存在較亮的條帶,可能表明存在蛋白污染。2.**濃度評估**:-**紫外分光光度計**:使用紫外分光光度計測定DNA在260nm處的吸光度,根據(jù)比爾-朗伯定律(Beer-Lambertlaw)計算DNA的濃度。對于純DNA,OD260的讀數(shù)為1.0時,大約相當(dāng)于50μg/mL的雙鏈DNA。-**熒光定量法**:使用熒光染料結(jié)合DNA,通過測量熒光變化來定量DNA。這種方法比紫外分光光度法更敏感、精確,并且可能對特定的核酸有特異性。
其作用位點相對局限,主要作用于高甘露糖型和部分雜合型 N - 連接糖鏈,對于復(fù)雜型 N - 連接糖鏈的作用較弱。Rat Fractalkine/CX3CL1
BloodGenomicDNAIsolationKitwithMagneticBeads是一種利用磁珠技術(shù)從血液中提取基因組DNA的試劑盒。以下是一些關(guān)鍵特點和應(yīng)用:1.**高效提取**:該試劑盒采用特殊的磁珠和緩沖體系,能夠快速且高效地從100μl至1ml的血液中分離和純化高質(zhì)量的基因組DNA。2.**磁珠特性**:獨特的磁珠具有很強的核酸親和力,在特定條件下可以快速分離和純化核酸。這些磁珠對磁場響應(yīng)迅速,使得提取過程既安全又便捷。3.**提取過程**:血液樣本在裂解液和蛋白酶K的作用下迅速裂解,釋放出的基因組DNA與磁珠特異性結(jié)合。通過磁分離架的作用,磁珠與溶液快速分離,經(jīng)過洗滌去除雜質(zhì),用洗脫液將基因組DNA從磁珠上洗脫下來。4.**應(yīng)用廣**:提取的基因組DNA可用于多種分子生物學(xué)實驗,如PCR擴增、酶切、基因分型、Southern雜交、高通量測序、基因組DNA文庫構(gòu)建等。5.**操作簡便**:整個抽提過程大約需要50分鐘,操作簡便,無需使用有毒有害的有機試劑,如酚或氯仿,提高了實驗的安全性。6.**高純度和高回收率**:提取的DNA純度高,A260/A280通常在1.7-1.9之間,表明蛋白和RNA的污染低?;厥章释ǔ3^80%。