轉(zhuǎn)染效率:線型PEI(LinePEI,LPEI)與其衍生物用作基因轉(zhuǎn)染載體的研究比分枝狀PEI(BranchedPEI,BPEI)要早一些,過去的研究認為在不考慮具體條件,LPEI/DNA轉(zhuǎn)染復(fù)合物的細胞毒性較低,有利于細胞定位,因此與BPEI相比應(yīng)該轉(zhuǎn)染效率高一些。但較近研究表明BPEI的分枝度高有利于形成小的轉(zhuǎn)染復(fù)合物,從而提高轉(zhuǎn)染效率,但同時細胞毒性也增大。超很高枝的、較柔性的PEI衍生物含有額外的仲胺基和叔胺基,在染實驗中發(fā)現(xiàn)這種PEI的毒性低,但轉(zhuǎn)染效率卻較高。GenEscort是采用各種分枝狀和超很高枝狀的小分子PEI與各種含有生理條件下可降解鍵的交聯(lián)劑交聯(lián),合成出的一系列很高枝的可降解的PEI衍生物。聚合物的分枝結(jié)構(gòu)使得其具有較高的正電性,因此易于高效地包裹各種DNA、RNA分子及質(zhì)粒形成小的納米顆粒,從而提高轉(zhuǎn)染效率,當所形成復(fù)合物進入細胞以后,其中所含的生理條件下可降解的化學(xué)鍵在細胞內(nèi)水解,使交聯(lián)聚合物分解為無細胞毒性的小分子PEI,這樣結(jié)構(gòu)的轉(zhuǎn)染試劑在體外應(yīng)用可以獲得高的轉(zhuǎn)染效率和低的細胞毒性,其可降解性對體內(nèi)應(yīng)用也具有重要的意義。瞬時表達分析檢測未重組質(zhì)粒DNA上基因的表達。蕪湖南昌細胞高效轉(zhuǎn)染試劑
轉(zhuǎn)染的注意事項:細胞鋪板密度用于轉(zhuǎn)染的較佳細胞密度根據(jù)不同的細胞類型或應(yīng)用而異。一般轉(zhuǎn)染時,貼壁細胞密度為70%-90%,懸浮細胞密度為2×106-4×106細胞/ml時效果較好。確保轉(zhuǎn)染時細胞沒有長滿或處于靜止期。因為轉(zhuǎn)染效率對細胞密度很敏感,所以在不同實驗間保持一個基本的傳代步驟很重要。鋪板細胞數(shù)目的增加可以增加轉(zhuǎn)染活性和細胞產(chǎn)量。在三種不同密度進行細胞鋪板的比較表明鋪板密度較高的,CAT活性也較高。得到較高活性所需的LIPOFECTAMINE試劑的量也相應(yīng)增加了。這些結(jié)果說明,對于轉(zhuǎn)染相同量的DNA所需的較佳陽離子脂質(zhì)體試劑的量會因細胞密度而異~廣州細胞高效轉(zhuǎn)染試劑直銷廠家果觀察到轉(zhuǎn)染效率降低,可以試著轉(zhuǎn)染新鮮培養(yǎng)的細胞以恢復(fù)較佳結(jié)果。
細胞轉(zhuǎn)染的注意事項:1.細胞鋪板密度用于轉(zhuǎn)染的較佳細胞密度根據(jù)不同的細胞類型或應(yīng)用而異。因轉(zhuǎn)染試劑對細胞有毒害作用,細胞太少,容易死。一般轉(zhuǎn)染時,貼壁細胞密度為70%-90%,懸浮細胞密度為2-4×106細胞/ml,確保轉(zhuǎn)染時細胞沒有長滿或處于靜止期。因為轉(zhuǎn)染效率對細胞密度很敏感,所以在不同實驗間保持一個基本的傳代步驟很重要。鋪板細胞數(shù)目的增加可以增加轉(zhuǎn)染活性和細胞產(chǎn)量。細胞的融合度必須要達到90%才能做啟動子的選擇獲得高轉(zhuǎn)染活性所需選擇的啟動子依賴于選用的細胞系和要表達的蛋白。CMV啟動子在大多數(shù)細胞類型中可以獲得高表達活性。同其他啟動子,如SV40和RSV(勞斯肉瘤細菌)相比,在BHK-21中其活性較高。這三種細菌啟動子在T細胞來源的細胞系,如Jurkat中組成表達水平較低。
細胞轉(zhuǎn)染,你至少要掌握以下幾點:主要有下面幾種方法::化學(xué)法:磷酸鈣法、DEAE-右旋糖苷法、陽離子脂質(zhì)體法;物理法:電穿孔法、顯微注射法、顆粒傳遞法;細菌介導(dǎo)法:逆轉(zhuǎn)錄細菌、腺細菌A.陽離子脂質(zhì)體法:帶正電的脂質(zhì)體與核酸帶負電的磷酸基團形成復(fù)合物被細胞內(nèi)吞。特點:簡單通用,適用性廣,轉(zhuǎn)染效率高,重復(fù)性好,但轉(zhuǎn)染時需除血清,轉(zhuǎn)染效率隨細胞類型變化大。由于脂質(zhì)體復(fù)合物與貼壁細胞的接觸機會遠大于懸浮細胞,所以貼壁比懸浮轉(zhuǎn)染效率要高。懸浮細胞建議使用電穿孔法。B.電穿孔法:利用高壓電脈沖對細胞膜的干擾,使其形成利于核酸進入的微孔震蕩后將試劑放在-20攝氏度保存,使用前還需震蕩。
細胞轉(zhuǎn)染的常用方法:磷酸鈣共沉淀原理:該法可用于瞬時或穩(wěn)定轉(zhuǎn)染。然而因其對pH、溫度和緩沖液鹽濃度的微小變化十分敏感,所得結(jié)果容易出現(xiàn)差異,且對許多類型的細胞培養(yǎng)物(尤其是原代細胞)具有細胞毒性,轉(zhuǎn)染效率較差。實驗步驟:將核酸與氯化鈣在磷酸鹽緩沖液中混合,同時控制好pH、溫度等條件→室溫孵育,生成濃縮DNA的極小不溶性顆粒沉淀→將顆粒型沉淀分散到細胞中,促進DNA粘附在細胞表面→共沉淀通過內(nèi)吞作用進入胞漿→分析細胞瞬時基因表達或者選擇穩(wěn)定性傳染重新接種于培養(yǎng)皿或瓶,較好在轉(zhuǎn)染前4小時換一次新鮮培養(yǎng)液。廣州細胞高效轉(zhuǎn)染試劑直銷廠家
細胞密度以及轉(zhuǎn)染的時間長短和培養(yǎng)基中血清的含量都是影響轉(zhuǎn)染效率的重要因素。蕪湖南昌細胞高效轉(zhuǎn)染試劑
轉(zhuǎn)染的注意事項:有血清時的轉(zhuǎn)染血清一度曾被認為會降低轉(zhuǎn)染效率,但只要在DNA-陽離子脂質(zhì)體復(fù)合物形成時不含血清,在轉(zhuǎn)染過程中是可以使用血清的。轉(zhuǎn)染過程在兩步中需要使用培養(yǎng)基做為稀釋液:在DNA-陽離子脂質(zhì)體復(fù)合物準備過程以及復(fù)合物同細胞接觸過程。在開始準備DNA和陽離子脂質(zhì)體試劑稀釋液時要使用無血清的培養(yǎng)基,因為血清會影響復(fù)合物的形成。但在復(fù)合物形成后,在加入細胞中前可以加入血清。陽離子脂質(zhì)體和DNA的較佳量在使用血清時會有所不同,因此如果你想在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中加入血清需要對條件進行優(yōu)化。大部分細胞可以在無血清培養(yǎng)基中幾個小時內(nèi)保持健康。對于對血清缺乏比較敏感的細胞,可以使用一些營養(yǎng)豐富的無血清培養(yǎng)基,或者在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中使用血清。蕪湖南昌細胞高效轉(zhuǎn)染試劑