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組織塊培養(yǎng)是將剪碎的組織塊直接移植在培養(yǎng)瓶壁上，加入培養(yǎng)基后進(jìn)行培養(yǎng)，原代細(xì)胞的培養(yǎng)是指直接從機(jī)體取下細(xì)胞、組織和部位后立即進(jìn)行培養(yǎng)。因此，較為嚴(yán)格地說(shuō)是指成功傳代之前的培養(yǎng)，此時(shí)的細(xì)胞保持原有細(xì)胞的基本性質(zhì)，如果是正常細(xì)胞，仍然保留二倍體數(shù)。原代細(xì)胞在培養(yǎng)的過(guò)程中，也可能產(chǎn)生基因突變而形成無(wú)限傳代的細(xì)胞株，傳代次數(shù)越多，就越有可能變成細(xì)胞株（基因缺陷型），因此科學(xué)界也通常把靠前代至第十代以?xún)?nèi)的培養(yǎng)細(xì)胞統(tǒng)稱(chēng)為原代細(xì)胞培養(yǎng)。較常用的原代細(xì)胞的培養(yǎng)有組織塊培養(yǎng)和分散細(xì)胞培養(yǎng)。它們產(chǎn)生的有毒物質(zhì)會(huì)影響原代細(xì)胞的生長(zhǎng)。濟(jì)南原代細(xì)胞分離試劑盒廠(chǎng)家批發(fā)價(jià)

膠原酶的配制：建議看相關(guān)的文獻(xiàn)進(jìn)行膠原酶的配制。小編常用的是DMEM進(jìn)行配制，配制好的膠原酶消化液放置在37℃水浴鍋內(nèi)預(yù)熱（注意現(xiàn)用現(xiàn)配）。胰酶（酶聯(lián)合法獲取原代細(xì)胞中會(huì)加入胰酶，相關(guān)文章也蠻多的）膠原酶消化時(shí)間：根據(jù)組織特性，消化時(shí)間會(huì)有差異。以小鼠腎細(xì)胞為例，加入膠原酶Ⅰ進(jìn)行消化后，放入37℃培養(yǎng)箱中消化45min~1h左右，期間每10min中震蕩一次，知道組織塊幾乎完全消失為止（若是組織塊剪得非常細(xì)小，時(shí)間可以短一些，30min左右即可）。原代細(xì)胞的獲取：酶消化法：所用試劑：膠原酶和胰酶。南京原代細(xì)胞分離試劑盒銷(xiāo)售廠(chǎng)家使細(xì)胞得以生存、生長(zhǎng)和繁殖(注意整個(gè)過(guò)程無(wú)菌)。

細(xì)胞培養(yǎng)注意事項(xiàng)及常見(jiàn)問(wèn)題解答：傳代1、貼壁細(xì)胞傳代時(shí)，先用消化液潤(rùn)洗一遍；棄掉后，再加入適量消化液置于孵箱或鏡下觀(guān)察消化；當(dāng)細(xì)胞變圓，彼此之間產(chǎn)生空隙，加入等量或大量的培養(yǎng)基終止消化，培養(yǎng)基中的血清可以克制胰蛋白酶的活性。2、這里我沒(méi)有明確提到胰蛋白酶的濃度，并不是說(shuō)濃度越高越好。胰蛋白酶底物的特異性差，會(huì)破壞細(xì)胞膜成分。PH8.0，37度環(huán)境下，消化液的消化能力是較強(qiáng)的。培養(yǎng)基中的血清會(huì)降低胰酶的消化能力，所以每次消化前，也要用PBS反復(fù)沖洗干凈培養(yǎng)皿。日常用的比較多的消化液濃度：a)0.25%胰蛋白+0.02%EDTA。

原代細(xì)胞的小知識(shí)：凍存通常我們不推薦重新凍存原代細(xì)胞，因?yàn)檫@可以促進(jìn)細(xì)胞衰老和/或?qū)е鹿δ茏兓?。原代?xì)胞非常敏感，重新凍結(jié)可能導(dǎo)致細(xì)胞死亡或損傷。與細(xì)胞系不同，原代細(xì)胞增殖有限，我們建議盡早使用原代細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)以防止遺傳漂移，如果你正在使用一個(gè)增殖困難的細(xì)胞類(lèi)型，你應(yīng)該密切監(jiān)測(cè)細(xì)胞形態(tài)，因?yàn)樯倭炕祀s的細(xì)胞（如成纖維細(xì)胞）可能隨著時(shí)間的推移，大量生長(zhǎng)從而成為主要細(xì)胞。正常的原代細(xì)胞培養(yǎng)，在無(wú)污染的情況下，建議培養(yǎng)基中不加抗體，抗體會(huì)影響細(xì)胞的某些基因變異從而導(dǎo)致實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)有差異，所以cellsystems的細(xì)胞在分離提取時(shí)就考慮到這點(diǎn)，他們不會(huì)采用任何抗體去分離和純化的同時(shí)，通過(guò)酶消化或者離心洗滌的方法讓細(xì)胞達(dá)到95%以上的純度，這樣得到的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)更為準(zhǔn)確。細(xì)胞培養(yǎng)過(guò)程中，多久更換一次培養(yǎng)基這取決于細(xì)胞生長(zhǎng)的速度。

原代細(xì)胞培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)室常規(guī)步驟為：1）將動(dòng)物組織從機(jī)體中取出并消毒除去存留在組織上的細(xì)菌、細(xì)菌、等污染源，這些污染源將會(huì)所需培養(yǎng)的原代細(xì)胞凋亡、停止生長(zhǎng)和繁殖直至死亡，因此整個(gè)原代細(xì)胞培養(yǎng)過(guò)程中較全在無(wú)菌狀態(tài)下進(jìn)行。2）將組織塊在選定的蛋白酶溶液中浸泡20-30分鐘，通常在37C水浴里進(jìn)行，而蛋白酶的選定取決于部位組織和所需細(xì)胞的類(lèi)型，比如成骨、肌肉、心、肝等就需要用胰蛋白酶才能解而出單個(gè)細(xì)胞，但是對(duì)于腦組織和乳腺等軟組織，就只能用分解能力較弱的膠原蛋白酶，以免損傷分散出來(lái)的單個(gè)細(xì)胞。3）將分散而成的單個(gè)細(xì)胞置于合適的培養(yǎng)基（含有特殊細(xì)胞生長(zhǎng)因子、添加劑以及血清，或者無(wú)血清培養(yǎng)基）中培養(yǎng)，使細(xì)胞得以生存、生長(zhǎng)和繁殖，整個(gè)過(guò)程都是在無(wú)菌情況下操作。將一管細(xì)胞從液氮罐中取出，注意保護(hù)手和眼睛。原代細(xì)胞分離試劑盒哪家好

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原代細(xì)胞與細(xì)胞系：原代細(xì)胞來(lái)源于或是新近死亡的供體，通過(guò)機(jī)械或酶方法解離獲得，其方案根據(jù)來(lái)源物種（例如人，小鼠）和所涉及的組織類(lèi)型而變化。通常包含以下步驟：組織切割和切碎，酶解，反復(fù)洗滌，研磨和微濾分餾，較后重新懸浮和接種收集的細(xì)胞群。對(duì)于松散的、被纖維結(jié)締包圍的組織，機(jī)械均質(zhì)化可能足以進(jìn)行解離。如果您的組織來(lái)源是外周血，差速離心便可以分離目的細(xì)胞。由于與細(xì)胞分裂相關(guān)的染色體端?？s短，原代細(xì)胞在體外的壽命有限。大約20到60次分裂后，端粒變得太短而無(wú)法承受另一個(gè)循環(huán)，導(dǎo)致細(xì)胞分裂停止。這種現(xiàn)象被稱(chēng)為Hayflick極限。對(duì)于具有無(wú)限倍增能力的細(xì)胞系，必須通過(guò)細(xì)菌或化學(xué)誘導(dǎo)方法的轉(zhuǎn)化使其永生化。細(xì)菌對(duì)于細(xì)胞的基因編輯引入有效促進(jìn)增殖的基因（例如SV-40，E6，E7），允許細(xì)胞無(wú)限的細(xì)胞分裂1。同樣地，化學(xué)誘導(dǎo)方法（例如電離輻射，氯化鎳，苯并芘）改變?cè)?xì)胞的基因組成，也可實(shí)現(xiàn)無(wú)限增殖。濟(jì)南原代細(xì)胞分離試劑盒廠(chǎng)家批發(fā)價(jià)