北京高鹽核酸酶

來源: 發(fā)布時(shí)間:2024-02-19

殘留的宿主DNA是生產(chǎn)中產(chǎn)生的雜質(zhì),其存在潛在的致瘤性、傳染性和免疫原性等風(fēng)險(xiǎn)。相關(guān)研究表明,基因的大小普遍在200bp以上,因此大于200bp有可能會(huì)有一定的致病性,而且殘留DNA片段越大,生物制品的風(fēng)險(xiǎn)等級越高。因此,各國監(jiān)管機(jī)構(gòu)對其提出了嚴(yán)格要求。美國食品藥品監(jiān)督管理局(FDA)在《關(guān)于人類基因zhiliao新產(chǎn)品生產(chǎn)指導(dǎo)文件》中明確指出HCD的片段要小于200bp。2022年5月,國家藥品監(jiān)督管理局藥品評審中心(CDE)發(fā)布的《體內(nèi)基因藥物產(chǎn)品藥學(xué)研究與評價(jià)技術(shù)指導(dǎo)原則(試行)》中也明確指出需對DNA殘留量和殘留片段大小進(jìn)行控制,建議盡量將DNA殘留片段的大小控制在200bp以下。高鹽能夠抑制AAV病毒載體聚集,提高AAV病毒載體產(chǎn)量。北京高鹽核酸酶

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氯化銫(CsCl)/碘克沙醇密度梯度離心大概是經(jīng)典的AAV純化技術(shù)了。這種技術(shù)適用于所有血清型且分辨率高,但是因生產(chǎn)工藝很難放大,低通量等缺點(diǎn)阻礙了其在工業(yè)中的應(yīng)用。繼密度梯度離心之后,色譜法不斷發(fā)展,并逐漸成為一種成熟的、主流的方法。色譜法通過載體的凈電荷、疏水性、對配體的親和性、大小以及其他性質(zhì)來分離并純化載體。這類技術(shù)有諸多的優(yōu)點(diǎn):更具可擴(kuò)展性和成本效益,可多次重復(fù)使用,可并行運(yùn)行或串聯(lián)運(yùn)行,還可有效去除非定植劑,這是開發(fā)后期的一個(gè)關(guān)鍵方面。黑龍江500mM鹽濃度條件高鹽核酸酶SAN HQ高鹽核酸酶更適合用于AAV生產(chǎn)。

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經(jīng)過多年的經(jīng)驗(yàn)積累及市場積淀,倍篤生物已組合多條不同產(chǎn)品線,分別滿足體外診斷、organoid及干細(xì)胞、細(xì)胞基因藥物等領(lǐng)域的需求。其中,細(xì)胞基因藥物領(lǐng)域產(chǎn)品線包含SAN HQ高鹽核酸酶及M-SAN HQ中鹽核酸酶、泊洛沙姆P 188 Bio、GMP級MSC/PSC培養(yǎng)基、GMP級膠原酶、AAV滴度檢測產(chǎn)品、工藝雜質(zhì)及外源污染物殘留檢測產(chǎn)品、AAV中和抗體蛋白酶等;相關(guān)品牌有挪威ArcticZymes Technologies、德國BASF、德國Sartorius、德國Nordmark、瑞典Genovis、中國君研生物等。

經(jīng)典的慢病毒載體(LV)的生產(chǎn)工藝如下,——三質(zhì)粒系統(tǒng)瞬時(shí)轉(zhuǎn)染HEK293細(xì)胞系,轉(zhuǎn)染24小時(shí)后LV由轉(zhuǎn)染陽性細(xì)胞生產(chǎn)并排出到培養(yǎng)上清液中;收獲上清培養(yǎng)液后,加入核酸酶去除HCD污染,通過澄清步驟去除大的細(xì)胞碎片等雜質(zhì);下游純化步驟分離LV載體,純化方法包括切向流過濾TFF、色譜純化及超速離心;純化后的LV病毒顆粒經(jīng)過無菌過濾,更換到優(yōu)化后的配方中,灌裝并冷凍保存。每批Car-T生產(chǎn)時(shí)取對應(yīng)量的LV病毒,切忌反復(fù)凍融,否則LV病毒會(huì)失活。ArcticZymes Technologies成立于20世紀(jì)80年代后期,總部位于挪威北部的特羅姆瑟(Troms?)。

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跟其他類型的核酸酶一樣,SAN HQ高鹽核酸酶和M-SAN HQ中鹽核酸酶的滅活方法有很多,分為可逆滅活及不可逆滅活。金屬離子螯合劑如EDTA會(huì)可逆抑制兩者的活性,加入的EDTA濃度一般是溶液中Mg2+濃度的2倍左右即可完全抑制活性;后續(xù)補(bǔ)加過量的Mg2+即可恢復(fù)核酸酶活性。加熱、還原劑(如DTT)、咪唑、甘油及表面活性劑(如高于15%濃度的Triton X-100、SDS、尿素等)等都可以使其不可逆失活。在生物工藝流程,需要結(jié)合上下游應(yīng)用需要選擇合適的方法去除或滅活核酸酶。SAN HQ高鹽核酸酶有兩個(gè)級別,分別是生物工藝級別SAN HQ和GMP級別SAN HQ GMP。黑龍江500mM鹽濃度條件高鹽核酸酶

SAN HQ高鹽核酸酶在低溫下也能保持高活性。北京高鹽核酸酶

離子交換層析 (IEC) 是一種簡單、通用且經(jīng)濟(jì)高效的技術(shù),已成為許多載體純化的關(guān)鍵步驟。IEC分為陰離子/陽離子交換柱,其中AEC(Anion-exchange chromatography)適用于AAV純化,是大規(guī)模AAV生產(chǎn)中去除空衣殼的主要手段。AAV衣殼亞種之間因表面電荷的差異導(dǎo)致不同的的等電點(diǎn)??找職I在6.3左右,包裝了完整基因組DNA后的病毒顆粒PI大致為5.9。AAV與基質(zhì)之間的靜電相互作用正是取決于衣殼的等電點(diǎn)(pI)和緩沖液的pH值。基于這一原理在正電荷固定相上進(jìn)行樣品的分離純化,去除雜質(zhì)(如空衣殼和部分衣殼),并有效地回收目的載體。北京高鹽核酸酶

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