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PAS染色試劑配制及染色方法：1.材料與方1.1 實(shí)驗(yàn)材料新鮮小白鼠肝臟、腎臟標(biāo)本各30例，均來(lái)自我室實(shí)驗(yàn)材料。1.2 主要試劑1.2.1 AAF固定液又稱酒精醋酸福爾馬林混合固定液，其配方：無(wú)水乙醇80mL，冰醋酸5mL、甲醛10mL。1.2.2 Carnoy固定液 氯仿300mL，冰醋酸100mL，95％酒精600mL。1.2.3 過(guò)碘酸溶液 0.5g過(guò)碘酸（HIO）溶于100mL蒸餾水或者70％酒精溶液中，或者按如下配方配制：過(guò)碘酸0.8g，95％乙醇70mL，醋酸鈉0.27g，水20mL。待溶解后置于4℃冰箱避光保存。1.2.4 無(wú)色品紅液（Schiff氏液） 在三角燒內(nèi)加入蒸餾水500mL，煮沸后，在保持微沸的情況下，加入堿性品紅2.5g，并不斷搖動(dòng)約5min（勿使之沸騰），使堿性品紅徹底溶解（溶解液為深紅色）。冷卻到50℃時(shí)，過(guò)濾，加入1N鹽酸50mL，再待冷卻至25℃時(shí)加入偏重亞硫酸鈉2.5g，塞住瓶口，搖動(dòng)容器以充分混合（此時(shí)顏色明顯變淡），然后避光放置或冰箱內(nèi)24h如用無(wú)水酒精作糖原的固定劑，有它的弊病。江西提供糖原染色試劑盒報(bào)價(jià)

糖原及粘液染色法注意事項(xiàng)：1、糖原的固定要及時(shí)，而且標(biāo)本要新鮮。2、如用無(wú)水酒精作糖原的固定劑，有它的弊病，因無(wú)水酒精滲透較慢，而且容易產(chǎn)生極化，（極化是糖原顆粒趨向于細(xì)胞的一端）。故用Gendre氏固定液效果較佳，其配法如下：苦味酸飽和于95%酒精85ml40%甲醛10ml冰醋酸5ml3、各種試劑必須化學(xué)純，亞硫酸鈉須有濃厚氣味，器皿必須潔凈而干燥，染色缸亦是。4、如果Schiff氏試劑，在經(jīng)過(guò)活性碳吸附漂白后不顯無(wú)色，首先應(yīng)考慮試劑中的偏重亞硫酸鈉是否失效。如果偏重亞硫酸鈉氣味不濃，使用時(shí)可考慮適當(dāng)?shù)脑黾佑昧?。其次考慮堿性品紅本身，常常雖屬同一生產(chǎn)廠家，但不同批號(hào)，其效果就可能不同，應(yīng)特別引起注意~上海品牌糖原染色試劑盒平均價(jià)格本試劑盒適用于骨髓細(xì)胞涂片，血液細(xì)胞涂片。

糖原染色是病理學(xué)中常規(guī)的染色方法之一，McManus在1946年較先使用高碘酸-雪夫技術(shù)顯示黏蛋白，該法常用來(lái)顯示糖原和其他多糖，該染色試劑盒不僅能夠顯示糖原，還能顯示中性黏液性物質(zhì)和某些酸性物質(zhì)以及軟骨、垂體、霉菌、色素、淀粉樣物質(zhì)、基底膜等。過(guò)碘酸(又稱高碘酸)是一種強(qiáng)氧化劑，它能氧化糖類及有關(guān)物質(zhì)中的1，2-乙二醇基，使之變?yōu)槎?，醛不Schiff試劑能結(jié)合成一種品紅化合物，產(chǎn)生紫紅色。由于高碘酸還可氧化細(xì)胞內(nèi)其他物質(zhì)，使用時(shí)應(yīng)注意選擇好高碘酸濃度和氧化時(shí)間，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于過(guò)氧化，這是很關(guān)鍵的步驟。PAS技術(shù)是很少可檢測(cè)不同種類的黏液物質(zhì)(如糖原、黏蛋白和糖蛋白)的方法，但PAS技術(shù)卻不能區(qū)別黏蛋白和糖原。若要冸確鑒別黏液物質(zhì)(如黏蛋白或糖原)，需加入糖原消化步驟。大多數(shù)情冴下可用α–淀粉酶或麥芽淀粉酶來(lái)催化糖原的糖苷鍵水解，形成水溶性的雙糖-麥芽糖，在應(yīng)用PAS技術(shù)之前將糖原從組織切片上除去。人類的唾液被認(rèn)為是消化糖原的一種有效手段，但是出于安全以及缺乏標(biāo)冸唾液的考慮，不主張應(yīng)用唾液

糖原染色：方法固定液Carnoy固定液：純酒精60ml冰醋酸10ml氯仿30ml,也可以選用75%酒精配制1)過(guò)碘酸酒清夜配法:過(guò)碘酸(HIO.2HO)0.4g95%酒精35mlM/5醋酸鈉(2.72g+蒸餾水100ml)5ml蒸餾水10ml保存于冰箱內(nèi),用棕色瓶,可用兩周.2)Schiff氏液:0.5克堿性品紅加入100毫升蒸餾水中,時(shí)時(shí)搖動(dòng)三角瓶5分鐘,使之充分溶解.冷卻至50℃后過(guò)濾加入10毫升1N鹽酸.冷卻至25℃,加入0.5-1克偏重硫酸鈉,在室溫中至少靜置24小時(shí),然后密封冰箱保存.3)Schiff氏酒**配置Schiff氏液11.5ml1NHCI0.5ml純酒精23ml4)亞硫酸水1%偏重亞硫酸蒸餾水180ml的樹(shù)膠溶解~取材必須新鮮，這一點(diǎn)對(duì)于從事細(xì)胞生物學(xué)研究尤為重要。

PAS技術(shù)是很少可檢測(cè)不同種類的黏液物質(zhì)(如糖原、黏蛋白和糖蛋白)的方法，但PAS技術(shù)卻不能區(qū)別黏蛋白和糖原。若要冸確鑒別黏液物質(zhì)(如黏蛋白或糖原)，需加入糖原消化步驟。大多數(shù)情冴下可用α–淀粉酶或麥芽淀粉酶來(lái)催化糖原的糖苷鍵水解，形成水溶性的雙糖-麥芽糖，在應(yīng)用PAS技術(shù)之前將糖原從組織切片上除去。人類的唾液被認(rèn)為是消化糖原的一種有效手段，但是出于安全以及缺乏標(biāo)冸唾液的考慮，不主張應(yīng)用唾液。所以網(wǎng)狀纖維的組織化學(xué)染色，在臨床病理診斷上占著相當(dāng)重要的位置。擁有日本進(jìn)口的各種染料，保證切片染色效果。北京正規(guī)糖原染色試劑盒單價(jià)

植物材料在選擇時(shí)須盡可能不損傷植物體或所需要的部分。江西提供糖原染色試劑盒報(bào)價(jià)

糖原染色的原理與操作方法是什么：（1）原理：過(guò)碘酸將血細(xì)胞內(nèi)的糖原氧化，生成醛基。醛基與雪夫液中的無(wú)色品紅結(jié)合，形成紫色化合物，定位于細(xì)胞質(zhì)中。（2）操作方法：干燥涂片，滴加甲醛固定液固定10分鐘，流水沖洗，晾干。滴加過(guò)碘酸溶液作用20分鐘，流水沖洗，晾干。滴加雪夫液作用60分鐘，流水沖洗，晾干。滴加甲基綠溶液復(fù)染10分鐘，流水沖洗，晾干鏡檢。細(xì)胞的組織化學(xué)方法，是研究細(xì)胞成分常用的方法之一。它是利用化學(xué)試劑與細(xì)胞內(nèi)的某些物質(zhì)進(jìn)行化學(xué)反應(yīng)，從而在細(xì)胞局部形成有色沉淀物，再通過(guò)顯微鏡對(duì)組織內(nèi)的生物化學(xué)成分進(jìn)行定性、定位、定量研究江西提供糖原染色試劑盒報(bào)價(jià)