無血清細胞凍存液使用方法:選擇凍存處于對數生長期的細胞有助于提高復蘇細胞存活率。1)按照常用方法收集懸浮細胞或貼壁細胞于試管中。2)按照培養(yǎng)細胞密度和所用細胞凍存管的尺寸計算所需凍存細胞數。(參考:5×105至5×106cells/ml)。3)取相當于所需細胞數的細胞懸浮液量,置于離心管中,離心收集培養(yǎng)細胞(參考離心條件:1,000~2,000rpm,4℃,3~5min)。移去離心管中的上清液。4)加入適量的無血清型細胞凍存液于離心管中,使細胞濃度為5×105至5×106cells/ml。緩慢地混合均勻,制成細胞混合液。5)將離心管中的細胞混合液分裝于已標示完全的冷凍保存管中。6)直接將含細胞混合液的凍存管放入-80℃以下冰箱,長期冷凍保存。在冰袋附近操作時,低溫避免保護劑對細胞造成損傷。重慶正規(guī)無血清細胞凍存液廠家推薦
無血清細胞凍存液復蘇細胞實驗步驟:1.從冰箱里取出細胞冷凍保存管,立即放入37℃振動水浴槽中快速解凍。2.待凍存管中細胞混合液完全融化后,立即加入1ml細胞培養(yǎng)基于該冷凍管中與細胞混合,再將細胞混合液從凍存管中移入含有9ml該細胞培養(yǎng)基的試管中,混合均勻。3.離心收集培養(yǎng)細胞(參考離心條件:1,000~2,000rpm,4℃,3~5min),移去上清液。4.清洗細胞,充分洗凈殘留凍存液。5.加入適量的新鮮細胞培養(yǎng)基,使用移液管緩緩地均勻細胞混合液。適量地稀釋后,將細胞混合液移至事先準備好的培養(yǎng)瓶中。廣州正規(guī)無血清細胞凍存液廠家推薦適量地稀釋后,將細胞混合液移至事先準備好的培養(yǎng)瓶中。
細胞凍存注意事項:離心問題:目前主要有兩種見解。一種是解凍后的細胞懸液直接吹打均勻后分裝到培養(yǎng)瓶中進行培養(yǎng),第二天換液。因為離心的目的是兩個,去除DMSO,去除死細胞,這個是標準流程,但對一般人來說,把握不好離心轉速和時間,轉的不夠活細胞沉底的少,細胞就全被扔掉了,轉過了活細胞會受壓過大,死亡。此外在操作過程中容易污染,所以不推薦。另一種說法為細胞懸液中含有二甲基亞砜(DMSO),DMSO對細胞有一定的毒副作用,所以須將離心后的液體前倒凈,且一定倒干凈。我在試驗中按照常規(guī)的離心分裝的方法進行復蘇,結果無有異常。
凍存細胞復蘇方法:1.從冰箱里取出細胞冷凍保存管,立即放入37℃振動水浴槽中快速解凍。2.待凍存管中細胞混合液完全融化后,立即加入1ml細胞培養(yǎng)基于該冷凍管中與細胞混合,再將細胞混合液從凍存管中移入含有9ml該細胞培養(yǎng)基的試管中,混合均勻。3.離心收集培養(yǎng)細胞(參考離心條件:1,000~2,000rpm,4℃,3~5min),移去上清液。4.清洗細胞,充分洗凈殘留凍存液。5.加入適量的新鮮細胞培養(yǎng)基,使用移液管緩緩地均勻細胞混合液。適量地稀釋后,將細胞混合液移至事先準備好的培養(yǎng)瓶中。6.鏡檢后,研究者可根據各自方法和需要來進行細胞培養(yǎng)。凍存細胞可直接存放于-80℃冰箱,穩(wěn)定保存數年。
細胞凍存,我們應該注意哪些事項:1、凍存液比例一般是培養(yǎng)基:血清:DMSO=7:2:1或5:4:1;動物種屬的原代細胞凍存液可采用的比例是培養(yǎng)基:血清:DMSO=0:9:1,即直接用血清重懸細胞再加入DMSO,盡管如此,原代細胞的復蘇成活率還是很低。2、有文獻表明,細胞以l℃/min的速度冷凍存活率較髙,因為這一速度可以很好的控制細胞內部晶體的產生。我們實際操作不可能將速度控制的這么精確,目前慣用的就是4℃30min、-20℃1h30min、-80℃2h后轉入液氮中。無血清細胞凍存液:降低細胞外溶液的電解質濃度,減少陽離子進入細胞的數量。石家莊無血清細胞凍存液直銷價
無血清細胞凍存液,2-8℃保存即可,無需再進行分裝。重慶正規(guī)無血清細胞凍存液廠家推薦
細胞凍存和復蘇的原則:慢凍速融,這樣更加有利于保持細胞的活力。凍存細胞不加任何保護劑,會導致細胞內冰晶的產生,從而使細胞產生內源性的機械損傷,引起細胞內環(huán)境滲透壓,PH,電解質等的改變,進而促使細胞死亡。細胞凍存液除去蛋白酶,添加適量配置好的凍存細胞培養(yǎng)液.細胞培養(yǎng)的傳代及日常維持過程中,在培養(yǎng)器具、培養(yǎng)液及各種準備工作方面都需大量的耗費,而且細胞一旦開始原代培養(yǎng),它的各種生物特性都將逐漸發(fā)生變化并隨著傳代次數的增加和體外環(huán)境條件的變化而不斷有新的變化。因此及時進行細胞凍存十分必要。細胞冷凍儲存在-70℃冰箱中可以保存一年之久;細胞儲存在液氮中,溫度達-196℃,理論上儲存時間是無限的。重慶正規(guī)無血清細胞凍存液廠家推薦