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來源: 發(fā)布時間:2022-07-13

細胞轉染的注意事項:1.細胞鋪板密度用于轉染的較佳細胞密度根據(jù)不同的細胞類型或應用而異。因轉染試劑對細胞有毒害作用,細胞太少,容易死。一般轉染時,貼壁細胞密度為70%-90%,懸浮細胞密度為2-4×106細胞/ml,確保轉染時細胞沒有長滿或處于靜止期。因為轉染效率對細胞密度很敏感,所以在不同實驗間保持一個基本的傳代步驟很重要。鋪板細胞數(shù)目的增加可以增加轉染活性和細胞產量。細胞的融合度必須要達到90%才能做啟動子的選擇獲得高轉染活性所需選擇的啟動子依賴于選用的細胞系和要表達的蛋白。CMV啟動子在大多數(shù)細胞類型中可以獲得高表達活性。同其他啟動子,如SV40和RSV(勞斯肉瘤細菌)相比,在BHK-21中其活性較高。這三種細菌啟動子在T細胞來源的細胞系,如Jurkat中組成表達水平較低。轉染后在培養(yǎng)基中加入PHA-L和PMA可以啟動Jurkat細胞中CMV啟動子,而單PMA就足以啟動KG1和K562(人骨髓瘤白細胞)中的CMV啟動子。SV40啟動子的表達在含有大T抗原(存在于COS-1和COS-7)時會提高,因為大T抗原可以刺激染色體外的合成。轉染技術轉染是將外源遺傳物質導入真核細胞的過程,是細胞和分子生物學研究的重要工具。武漢正規(guī)細胞高效轉染試劑廠家現(xiàn)貨

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細胞轉染常用步驟:1.轉染試劑的準備①將400ul去核酸酶水加入管中,震蕩10秒鐘,溶解脂狀物。②震蕩后將試劑放在-20攝氏度保存,使用前還需震蕩。2.選擇合適的混合比例(1:1-1:2/脂質體體積:DNA質量)來轉染細胞。在一個轉染管中加入合適體積的無血清培養(yǎng)基。加入合適質量的MyoD或者EGFP的DNA,震蕩后在加入合適體積的轉染試劑,再次震蕩。3.將混合液在室溫放置10―15分鐘。4.吸去培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基,用PBS或者無血清培養(yǎng)基清洗一次。5.加入混合液,將細胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個小時。6.到時后,根據(jù)細胞種類決定是否移除混合液,之后加入完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24-48小時成都正規(guī)細胞高效轉染試劑廠家現(xiàn)貨當復合物接近細胞膜時,通過內吞作用形成內體進入細胞。

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轉染的注意事項:培養(yǎng)基中的物品物品,比如青霉素和鏈霉素,是影響轉染的培養(yǎng)基添加物。這些物品一般對于真核細胞無毒,但陽離子脂質體試劑增加了細胞的通透性,使物品可以進入細胞。這降低了細胞的活性,導致轉染效率低。所以,在轉染培養(yǎng)基中不能使用物品,甚至在準備轉染前進行細胞鋪板時也要避免使用物品。這樣,在轉染前也不必潤洗細胞。對于穩(wěn)定轉染,不要在選擇性培養(yǎng)基中使用青霉素和鏈霉素,因為這些物品是GENETICIN選擇性物品的競爭性克制劑。另外,為了保證無血清培養(yǎng)基中細胞的健康生長,使用比含血清培養(yǎng)基更少的物品量。大多數(shù)已建立的細胞系都是非整倍體,原代培養(yǎng)包括了表達不同基因組合的細胞的混合物。細胞培養(yǎng)在實驗室中保存數(shù)月和數(shù)年后會經歷突變,總染色體重組或基因調控變化等而演化,這會導致和轉染相關的細胞行為的變化。如果隨時間發(fā)現(xiàn)這種變化,融化一管新鮮的細胞可能會恢復原先的轉染活性。比如,新鮮融化的NIH3T3細胞比傳代8次的細胞表現(xiàn)出更高的轉染效率,融化細胞的進一步傳代并沒有降低轉染效率。因此,如果觀察到轉染效率降低,可以試著轉染新鮮培養(yǎng)的細胞以恢復較佳結果

如何有效提高細胞轉染實驗效率:1.選擇合適的轉染試劑不同細胞系轉染效率通常不同,但細胞系的選擇通常是根據(jù)實驗的需要,因此在轉染實驗前應根據(jù)實驗要求和細胞特性選擇適合的轉染試劑。每種轉染試劑都會提供一些已經成功轉染的細胞株列表和文獻,通過這些資料可選擇較適合實驗設計的轉染試劑。當然,較適合的是高效、低毒、方便、廉價的轉染試劑。2.保持較佳的細胞狀態(tài)一般低的細胞代數(shù)(<50)能確?;蛐筒蛔儭]^適合轉染的細胞是經過幾次傳代后達到指數(shù)生長期的細胞,細胞生長旺盛,較容易轉染。細胞培養(yǎng)在實驗室中保存數(shù)月和數(shù)年后會經歷突變,總染色體重組或基因調控變化等而演化。這會導致和轉染相關的細胞行為的變化。也就是說同一種系的細胞株,在各實驗室不同培養(yǎng)條件下,其生物學性狀發(fā)生不同程度的改變,導致其轉染特性也發(fā)生變化。因此,如果發(fā)現(xiàn)轉染效率降低,可以試著轉染新鮮培養(yǎng)的細胞以恢復較佳結果。對大多數(shù)細胞而言,均需要在轉染當天或前現(xiàn)在鋪板,第二天上午進行轉染。

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細胞轉染實驗簡介實驗步驟:1、細胞傳代(1)試驗準備:200ul/1mlTip頭各一盒(以上物品均需高壓滅菌),酒精棉球,廢液缸,試管架,微量移液器,記號筆,培養(yǎng)皿,離心管。(2)棄掉培養(yǎng)皿中的培養(yǎng)基,用1ml的PBS溶液洗滌兩次。(3)用Tip頭加入1mlTrypsin液,消化1分鐘(37。C,5%CO2)。用手輕拍培養(yǎng)瓶壁,觀察到細胞完全從壁上脫落下來為止。(4)加入1ml的含血清培養(yǎng)基終止反應。(5)用頭多次吹吸,使細胞完全分散開。(6)將培養(yǎng)液裝入離心管中,1000rpm離心5min。(7)用培養(yǎng)液重懸細胞,細胞計數(shù)后選擇0.8X106個細胞加入一個35mm培養(yǎng)皿。(8)將合適體積完全培養(yǎng)液加入離心管中,混勻細胞后輕輕加入培養(yǎng)皿中,使其均勻分布。(9)將培養(yǎng)皿轉入CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),第二天轉染。代細胞和傳代次數(shù)多的細胞都不是較佳選擇。石家莊正規(guī)細胞高效轉染試劑推薦廠家

通過緩沖液的作用以及脂質與內體膜融合,增大內體的內部滲透壓。武漢正規(guī)細胞高效轉染試劑廠家現(xiàn)貨

細胞轉染方法:1.脂質體轉染法陽離子脂質體表面帶正電荷,能與核酸的磷酸根通過靜電作用,將DNA分子包裹入內,形成DNA脂復合物,也能被表面帶負電的細胞膜吸附,再通過融合或細胞內吞進入細胞。脂質體轉染適用于把DNA轉染入懸浮或貼壁培養(yǎng)細胞中,是目前實驗室較方便的轉染方法之一,其轉染率較高,優(yōu)于磷酸鈣法。由于脂質體對細胞有一定的毒性,所以轉染時間一般不超過24小時。常用細胞類型:cos-7、BHK、NIH3T3、Hela等2.電穿孔轉染法電流能夠可逆地擊穿細胞膜形成瞬時的水通路或膜上小孔促使DNA分子進入胞內,這種方法就是電穿孔。當遇到某些脂質體轉染效率很低或幾乎無法轉入時建議用電穿孔法轉染。一般情況下,高電場強度會殺死50%-70%的細胞。現(xiàn)在針對細胞死亡開發(fā)出了一種電轉保護劑,可以較大的降低細胞的死亡率,同時提高電穿孔轉染效率武漢正規(guī)細胞高效轉染試劑廠家現(xiàn)貨